НАУКА ОБРАЗОВАНИЯ - издательский дом

Switch to desktop

Материалы

ДИАГНОСТИКА И АДИТИВНАЯ ТЕРАПИЯ МИКОПЛАЗМОЗА МЕЛКОГО РОГАТОГО СКОТА

 

Журнал «НАУЧНАЯ ЖИЗНЬ»  [СКАЧАТЬ СТАТЬЮ В PDF]
тОМ 18, выпУСК 1, 2023 

Рубрика: ИНФЕКЦИОННЫЕ БОЛЕЗНИ И ИММУНОЛОГИЯ
DOI: 10.35679/1991-9476-2023-18-1
   
Для цитирования:

Агольцов В. А., Лигидова М. М., Падило Л. П., Калабеков М. И. Диагностика и адитивная терапия микоплазмоза мелкого рогатого скота // Научная жизнь. 2023. Т. 18. Вып. 1 (127).

   
Авторы: 

Агольцов Валерий Александрович, д-р ветеринар. наук, профессор, профессор кафедры «Болезни животных и ветеринарно-санитарная экспертиза», ФГБОУ ВО «Саратовский государственный университет генетики, биотехнологии и инженерии им. Н. И. Вавилова»: Россия, 410012, Саратовская обл., г. Саратов, пр-кт им. Петра Столыпина, зд. 4, стр. 3.
Лигидова Марьяна Мухамедовна, аспирант кафедры «Болезни животных и ветеринарно-санитарная экспертиза», ФГБОУ ВО «Саратовский государственный университет генетики, биотехнологии и инженерии им. Н. И. Вавилова»: Россия, 410012, Саратовская обл., г. Саратов, пр-кт им. Петра Столыпина, зд. 4, стр. 3.
Падило Лариса Павловна, канд. биол. наук, доцент кафедры «Болезни животных и ветеринарно-санитарная экспертиза», ФГБОУ ВО «Саратовский государственный университет генетики, биотехнологии и инженерии им. Н. И. Вавилова»: Россия, 410012, Саратовская обл., г. Саратов, пр-кт им. Петра Столыпина, зд. 4, стр. 3.
Калабеков Муталиф Ибрагимович, д-р ветеринар. наук, профессор, профессор кафедры «Зоотехния и ветеринарно-санитарная экспертиза», ФГБОУ ВО «Кабардино-Балкарский государственный аграрный университет им. В. М. Кокова»: Россия, 360030, Кабардино-Балкарская Республика, г. Нальчик, пр-кт Ленина, 1в.

 

Тел.: (917) 207-40-45
E-mail: Agoltsov-Saratov@yandex.ru

   
Реферат: 

Целью исследования было проведение испытания комплексного препарата энтрикима, в состав которого входят: энрофлоксацин, триметоприм и тилмикозина фосфат, на ягнятах и козлятах, в неблагополучных по микоплазмозу хозяйствах. Перед началом испытаний препарата от заболевших ягнят и козлят были взяты по 3 пробы от каждого вида животных (всего 6) в виде мазка из носовых ходов (при жизни), а также после их гибели из лёгких и суставной жидкости. Бактериологическими исследованиями мазка из носа из 6-ти проб в 6-ти были выделены изоляты P. multocida, в 3-х пробах были обнаружены изоляты S. sp. hamolisierend, в 2-х пробах изоляты P. haemolytica и M. mycoides subsp. mycoides. При исследовании лёгких трупов павших ягнят и козлят были взяты также по 3 пробы от каждого вида животных. При этом из 6-ти проб в 6-ти были выделены изоляты P. multocida, в 4-х пробах были обнаружены изоляты S. sp. hamolisierend, в 3-х пробах изоляты P. haemolytica и M. agalactiae и в 2-х M. mycoides subsp. mycoides. При исследовании суставной жидкости от трупов павших ягнят и козлят были взяты также по 3 пробы от каждого вида животных. При этом в 6-ти пробах из 6-ти были выделены изоляты S. sp. hamolisierend, в 4-х пробах были обнаружены изоляты P. haemolytica, M. agalactiae и M. mycoides subsp. mycoides. Для подтверждения диагноза, полученного бактериологическими исследованиями, применялся и молекулярно-генетический метод диагностики (ПЦР). В ПЦР, результаты, полученные при проведении бактериологических исследований лёгких, были подтверждены. Геномы возбудителей: M. mycoides subsp. mycoides, M. agalactiae P. haemolytica и S. sp. hamolisierend были выявлены во всех 6-ти пробах. Для лечения ягнят и козлят применяли 5% раствор энтрикима орально в дозе 0,5 см3/1 кг массы тела два раза в сутки 7 дней подряд. Через 3 дня после окончания курса лечения брали мазка из носа для комплексных лабораторных исследований (бактериологические и молекулярно-генетические). ПЦР-исследованиями установлено, что применённая терапия не в полной мере оказала положительное влияние на освобождение организма молодняка мелкого рогатого скота от отдельных видов микоплазм, в частности был обнаружен геном M. agalactiae в одной пробе из шести (16,6%), а также в двух пробах из шести геномы P. multocida и S. sp. hamolisierend (33,3%).

   
Ключевые слова: микоплазмоз овец и коз, бактериологическая и молекулярно-генетическая диагностика, энтриким (энрофлоксацин, триметоприм и тилмикозин), лечение
   

Список литературы:

1. Агольцов В. А., Падило Л. П., Бирюкова О. П., Лигидова М. М. Эффективность и безопасность лекарственных препаратов при лечении экспериментальных и спонтанных микоплазменных инфекций // Ветеринария сегодня. – 2022. – № 11 (2). – С. 169–175. DOI: 10.29326/2304-196X-2022-11-2-169-175.

2. Agoltsov V. A., Padilo L. P., Biryukova O. P., Ligidova M. М. Effectiveness and safety of therapeutics used for treatment of experimental or spontaneous Mycoplasma infections // Veterinary Science Today. – 2022. – № 11 (2). – Pp. 169–175. DOI: 10.29326/2304-196X-2022-11-2-169-175.
3. Ambroset C., Pau-Roblot C., Game Y., Gaurivaud P., Tardy F. Identification and characterization of Mycoplasma feriruminatoris sp. nov. strains isolated from Alpine ibex: A 4th species in the Mycoplasma mycoides cluster hosted by non-domesticated ruminants? // Front. Microbiol. – 2017. – № 8. – 00939. DOI: 10.3389/fmicb.2017.00939.
4. Arcangioli M. A., Chazel M., Sellal E., Botrel M. A., Bezille P., Poumarat F., et al. Prevalence of Mycoplasma bovis udder infection in dairy cattle: preliminary field investigation in southeast France // New Zealand Veterinary Journal. – 2011. – № 59 (2). – Pp. 75–78. DOI: 10.1080/00480169.2011.552856.
5. Bednarek D., Ayling R. D., Nicholas R. A., Dudek K., Szymańska-Czerwinska M. Serological survey to determine the occurrence of respiratory Mycoplasma infections in the Polish cattle population // Vet. Rec. – 2012. – № 171 (2). – 100545. DOI: 10.1136/vr.100545.
6. Bergonier D., Berthelot X., Poumarat F. Contagious agalactia of small ruminants: current knowledge concerning epidemiology, diagnosis and control // Rev. Sci. Tech. – 1997. – № 16 (3). – Pp. 848–873. DOI: 10.20506/rst.16.3.1062.
7. Bergonier D., Poumarat F. Agalactie contagieuse des petits ruminants: épidémiologie, diagnostic et contrôle = Contagious agalactia of small ruminants: epidemiology, diagnosis and control // Rev. Sci. Tech. – 1996. – № 15 (4). – Pp. 1431–1475. PMID: 9527414. (in French)
8. Calcutt M. J., Lysnyansky I., Sachse K., Fox L. K., Nicholas R. A. J., Ayling R. D. Gap analysis of Mycoplasma bovis disease, diagnosis and control: An aid to identify future development requirements // Transbound. Emerg. Dis. – 2018. – № 65 (Suppl 1). – Pp. 91–109. DOI: 10.1111/tbed.12860.
9. De Almeida J. F., do Nascimento E. R., de Almeida Pereira V. L., Barreto M. L., de Martino Campos C. A., de Azevedo E. O. Polimerase chain reaction (PCR) in the diagnosis of goat mycoplasmosis proceeding from cultures stored in glycerol // Rev. Bras. Med. Vet. – 2007. – № 29 (2). – Pp. 54–57.
10. Gerchman I., Levisohn S., Mikula I., Manso-Silván L., Lysnyansky I. Characterization of in vivo-acquired resistance to macrolides of Mycoplasma gallisepticum strains isolated from poultry // Vet. Res. – 2011. – № 42 (1). – Pp. 42-90. DOI: 10.1186/1297-9716-42-90.
11. Hegde Shivanand, Hegde Shrilakshmi, Spergser J., Brunthaler R., Rosengarten R., Chopra-Dewasthaly R. In vitro and in vivo cell invasion and systemic spreading of Mycoplasma agalactiae in the sheep infection model // Int. J. Med. Microbiol. – 2014. – № 304 (8). – Pp. 1024–1231. DOI: 10.1016/j.ijmm.2014.07.011.
12. Politis A. P., Vasileiou N. G. C., Ioannidi K. S., Mavrogianni V. S. Treatment of bacterial respiratory infections in lambs // Small Ruminant Research. – 2019. – № 176. – Pp. 70–75. DOI: 10.1016/j.smallrumres.2019.05.005.
13. Rosales R. S., Puleio R., Loria G. R., Catania S., Nicholas R. A. J. Mycoplasmas: Brain invaders? // Res. Vet. Sci. – 2017. – № 113. – Pp. 56–61. DOI: 10.1016/j.rvsc.2017.09.006.
14. Step D. L., Kirkpatrick J. G. Mycoplasma infection in cattle. Pneumonia – arthritis syndrome // The Bovine Practitioner. – 2001. – № 35 (2). – Pp. 149–155. DOI: 10.21423/bovine-vol35no2p149-155.
15. Tortorelli G., Carrillo Gaeta N., Mendonça Ribeiro B. L., Miranda Marques L., Timenetsky J., Gregory L. Evaluation of Mollicutes microorganisms in respiratory disease of cattle and their relationship to clinical signs // J. Vet. Intern. Med. – 2017. – № 31 (4). – Pp. 1215–1220. DOI: 10.1111/jvim.14721.

   
English version:

DIAGNOSTICS AND ADDITIVE THERAPY OF MYCOPLASMOSIS OF SMALL CATTLE

 

Agoltsov Valery Aleksandrovich, Dr. of Vet. Sci., Prof., Prof. of the Depart. of Animal Diseases and Veterinary-Sanitary Expertise, Saratov State University of Genetics, Biotechnology and Engineering named after N.I. Vavilov, Saratov, Russia.
Ligidova Mariana Mukhamedovna, Postgraduate of the Depart. of Animal Diseases and Veterinary-Sanitary Expertise, Saratov State University of Genetics, Biotechnology and Engineering named after N.I. Vavilov, Saratov, Russia.
Padilo Larisa Pavlovna, Cand. of Biol. Sci., Ass. Prof. of the Depart. of Animal Diseases and Veterinary-Sanitary Expertise, Saratov State University of Genetics, Biotechnology and Engineering named after N.I. Vavilov, Saratov, Russia.
Kalabekov Mutalif Ibragimovich, Dr. of Vet. Sci., Prof., Prof. of the Depart. of Animal Science and Veterinary-Sanitary Expertise, Kabardino-Balkarian State Agrarian University named after V.M. Kokov, Nalchik, Russia.

 

Keywords: mycoplasmosis of sheep and goats, bacteriological and molecular genetic diagnostics, entrikim (enrofloxacin, trimethoprim and tilmicosin), treatment.

 

Abstract. The aim of the study was to test the complex drug entrikima, which includes: enrofloxacin, trimethoprim and tilmicosin phosphate, on lambs and goats, in farms with mycoplasmosis problems. Before the start of the drug testing, 3 samples from each animal species (6 in total) were taken from diseased lambs and goats in the form of a smear from the nasal passages (during life), as well as after their death from the lungs and articular fluid. Bacteriological studies of a nasal smear isolated P. multocida isolates from 6 samples in 6, and isolates were found in 3 samples. S. sp. hamolisierend, in 2 samples of isolates P. haemolytica and M. mycoides subsp. mycoides. When examining the light corpses of fallen lambs and goats, 3 samples were also taken from each animal species. At the same time, P. multocida isolates were isolated from 6 samples in 6,  isolates were found in 4 samples. S. sp. hamolisierend, in 3 samples isolates. of P. haemolytica and M. agalactiae and in 2 M. mycoides subsp. mycoides. In the study of articular fluid from the corpses of fallen lambs and goats, 3 samples were also taken from each animal species. At the same time, isolates were isolated in 6 samples out of 6. - S. sp. hamolisierend, isolates were found in 4 samples: P. haemolytica, M. agalactiae и M. mycoides subsp. mycoides. To confirm the diagnosis obtained by bacteriological studies, a molecular genetic diagnostic method (PCR) was also used. In PCR, the results obtained during bacteriological studies of the lungs were confirmed. The genomes of pathogens: M. mycoides subsp. mycoides, M. agalactiae P. haemolytica and S. sp. hamolisierend were detected in all 6 samples. For the treatment of lambs and goats, a 5% solution of entrikim was used orally at a dose of 0.5 cm3 / 1 kg of body weight twice a day for 7 consecutive days. 3 days after the end of the course of treatment, a nasal smear was taken for complex laboratory studies (bacteriological and molecular genetic). PCR studies have established that the applied therapy did not fully have a positive effect on the release of the organism of young cattle from certain types of mycoplasmas, in particular, the M. agalactiae genome was detected in one sample out of six (16.6%), as well as in two samples out of six genomes of P. multocida and S. sp. Hamolisierend (33.3%).

   
   For citation: Agoltsov, V.A., Ligidova, M.M., Padilo, L.P., Kalabekov, M.I. (2023) Diagnostics and additive therapy of mycoplasmosis of small cattle. Nauchnaya zhizn' [Scientific Life], vol. 18, iss. 1 (127). (in Russian)

 

К содержанию»