НАУКА ОБРАЗОВАНИЯ - издательский дом

Switch to desktop

Материалы

ИСПОЛЬЗОВАНИЕ СПЛИТ-КОНЪЮГИРОВАННОЙ ПРОТИВОБРУЦЕЛЛЕЗНОЙ ВАКЦИНЫ В КАЧЕСТВЕ «ПРОВОКАТОРА» ДЛЯ ВЫЯВЛЕНИЯ БОЛЬНЫХ БРУЦЕЛЛЕЗОМ ЖИВОТНЫХ

 

Журнал «НАУЧНАЯ ЖИЗНЬ»  [СКАЧАТЬ СТАТЬЮ В PDF]
т. 14, вып. 5, май 2019 

Рубрика: ВЕТЕРИНАРНАЯ МИКРОБИОЛОГИЯ, ВИРУСОЛОГИЯ И ИММУНОЛОГИЯ
Страницы:  693–705
DOI: 10.26088/INOB.2019.93.31128
   
Авторы: 

Веселовский Степан Юрьевич, канд. ветеринар. наук, доцент, доцент кафедры «Болезни животных и ветеринарно-санитарная экспертиза», ФГБОУ ВО «Саратовский государственный аграрный университет им. Н. И. Вавилова»: Россия, 410012, г. Саратов, Театральная пл., 1.

Агольцов Валерий Александрович, д-р ветеринар. наук, профессор, профессор кафедры «Болезни животных и ветеринарно-санитарная экспертиза», ФГБОУ ВО «Саратовский государственный аграрный университет им. Н. И. Вавилова»: Россия, 410012, г. Саратов, Театральная пл., 1.

Частов Алексей Александрович, аспирант кафедры «Болезни животных и ветеринарно-санитарная экспертиза», ФГБОУ ВО «Саратовский государственный аграрный университет им. Н. И. Вавилова»: Россия, 410012, г. Саратов, Театральная пл., 1.

Попова Ольга Михайловна, д-р биол. наук, доцент, зав. кафедрой «Технология продуктов питания», проректор по научной и социальной работе, ФГБОУ ВО Саратовский государственный аграрный университет им. Н. И. Вавилова»: Россия, 410012, г. Саратов, Театральная пл., 1.

Девришов Давуд Абдулсемедович, чл.-корр. РАН, д-р биол. наук, профессор, зав. кафедрой «Иммунология и биотехнология», ФГБОУ ВО «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии – МВА им. К. И. Скрябина»: Россия,109472, г. Москва, ул. Академика Скрябина, 23.

Тел.: (845-2) 23-32-92

E-mail: Agoltsov-Saratov@yandex.ru

   
Реферат:  Проведено испытание сплит-конъюгированной вакцины против бруцеллеза животных в качестве провокатора, с целью выявления больных (латентных) животных в благополучном и неблагополучном по бруцеллезу хозяйстве. В крови здоровых животных после введения испытуемой вакцины антитела сохраняются до 2,5 месяцев, затем исчезают, а в крови больных животных антитела остаются и через 3,5, 4,5 и 7,5 месяцев и постепенно со временем исчезают. Сплит-конъюгированная вакцина против бруцеллеза животных обладает «провокационным действием», обостряет вялотекущий инфекционный процесс и тем самым позволяет выявить больных животных. Рекомендуем применять сплит-конъюгированную вакцину против бруцеллеза животных в неблагополучных по бруцеллезу хозяйствах с целью обнаружения латентных (больных скрытой формой бруцеллеза) животных, и создания гуморального иммунитета животным при сохранении антител в крови животных в течение 2,5 месяцев. В случае малого выявления в хозяйстве больных бруцеллезом животных (от 1 до 5 голов) рекомендуем применять вакцину как для выявления больных бруцеллезом животных, так и для создания иммунитета здоровым животным двукратно с интервалом 3 месяца. В случае выявления большого количества в хозяйстве больных бруцеллезом животных (от 6 до 20 и выше голов) рекомендуем применять вакцину, после ликвидации больного поголовья однократно, с последующим применением вакцины из штамма Brucella abortus 82, которой нужно вакцинировать животных после прохождения отела (май–июль). Сплитконъюгированную вакцину против бруцеллеза животных можно использовать в любое время года, поскольку она не вызывает абортов.
   
Ключевые слова: бруцеллез животных, сплит-коньюгированная вакцина против бруцеллеза животных, провокационное действие, больные скрытой формой бруцеллеза животные, обострение инфекционного процесса.
   

Список литературы:

1. Веселовский С. Ю. Экспериментальное применение сплит-конъюгированной вакцины против бруцеллеза животных с использованием иммуномодулятора полиоксидония // С. Ю. Веселовский, В. А. Агольцов, О. М. Попова, Д. А. Девришов и др. // Научная жизнь. – Москва. – 2018. – № 2. – С. 89–100.

2. Иванов Н. П. Бруцеллез животных : методы и средства борьбы с ним. – Алматы, 2006. – 506 с.

3. Иванов А. В. Иммунологические свойства вакцинных штаммов Brucella abortus / Иванов А. В. // Ветеринария. – 2009. – № 3. – С. 27–29.

4. Иванов А. В. Изыскание наиболее эффективных живой и гамма-инактивированных противобруцеллезных вакцин для мелкого рогатого скота / А. В. Иванов, Р. Х. Юсупов, К. М. Салмаков и др. // Научнопроизводственный журнал «Ветеринарный врач». – 2009. – № 4. – С. 19–22.

5. Концепция контроля рисков возникновения и распространения эпизоотических очагов зооантропонозов: Метод. положения / СО Россельхозакадемии. – Новосибирск, 2011. – 21 с.

6. Наставление по диагностике бруцеллеза животных от 29 сентября 2003 г. № 13-5-02/0850.

7. Новицкий А. А. Использование провоцирующих свойств химической вакцины для выявления латентных форм бруцеллеза / А. А. Новицкий // Современные проблемы и научное обеспечение развития животноводства материалы международной научно-практической конференции. ФГБОУ ВО «Омский государственный аграрный университет им. П. А. Столыпина». – 2016. – С. 153–159.

8. Пути решения проблем, обуславливающие актуальность бруцеллеза / О. Д. Скляров, А. И. Климанов, К.В.Шумилов идр.// Ветеринария. – 2011. – № 1. – С. 34–38.

9. Реакция непрямой гемагглютинации при бруцеллезе крупного рогатого скота / С. Р. Хаиров, О. Ю. Юсупов, К. В. Шумилов, А. И. Климанов // Ветеринария. – 2005. – № 5. – С. 25–26.

10. Скляров О. Д. Пути решения проблем, обуславливающие актуальность бруцеллеза / О. Д. Скляров, А. И. Климанов, К. В. Шумилов, А. А. Зинова, Н. К. Букова, И. А. Логинов // Ветеринария. – 2011. – № 1. – С. 34–38.

11. Состояние и перспективы изыскания нового поколения вак цин при бруцеллезе животных / А. В. Иванов, К. М. Салмаков, А. М. Фомин, А. Н. Чернов // Научно-производственный журнал «Ветеринарный врач». – 2009. – № 6. – С. 9–12. 123.

12. Adams L. G. Development of live vaccines against Brucella / L. G. Adams Ed., Pp. // in Studies of the study of brucellosis. – 1990. – Р. 250–256.

13. 128. Alton G. G. Rev 1 Brucella melitensis vaccine / G. G. Alton, S. S. Elberg // Veterinary Bulletin, 1967. – Vol. 37. – Р. 793–800.

14. Amano A. H. Takeuchi and N. Furuta: The outer mebrane vesicles function as an offensive weapon in host-parasite interactions / A. Amano, H. Takeuchi, N. Furuta // Microbes and Infection. – 2010. – Vol. 12. – № 11. – Р. 791–798.

15. Ashford D. A. Adverse Events in Humans Associated with the Accidental Impact of the Brucellosis Cancer Vaccine in the Home RB51 / D. A. Ashford, J. Di Pietra, J. Lingappa // et al., Vaccine, vol. 22. – № 25–26. – 2004. Р. 3435–3439.

16. Dzata G. K. Effect of adjuvants on immune responses in cattle injected with soluble antigen Brucella abortus / G. K. Dzata, A. W. Confer, J. H. Wyckoff // Veterinary microbiology, 1991. – Vol. 29. – № 1. – Р. 27–48.

17. Evaluation of three competitive ELISAs and a fluorescence polarisation assay for the diagnosis of bovine brucellosis / Praud A., Durán-Ferrer M., Fretin D., Jaÿ M., O'Connor M., Stournara A., Tittarelli. Dias M., Garin-Bastuji B., The Veterinary Journal. – Volume 216, October 2016. – P. 38–44.

18. Jain-Gupta A. Vemulapalli et al. Pluronic P85 improves the effectiveness of external membrane vesicles as a subunit vaccine against Brucella melitensis in mice / A. JainGupta, R. Contreras-Rodriguez // FEMS Immunology and Medical Microbiology. – 2012. vol. 66. – № 3. – Р. 436–444.

19. Marin C. M. The effect of antibiotics contained in two selective Brucella media on the growth of B. abortus, B.melitensis and B. ovis. / C. M. Marin, J. L. Alabart, J. M. Blasco // J Clin Microbiol, 1996. 34: 426-8.

20. Moriyon M. J. Coarse vaccines in animal brucellosis: structural and genetic basis and current status / M. J. Moriyón // Veterinary Research, 2004. – V. 35. – № 1. – Р. 1–38.

21. Oliveira B. S. Barriers to the development of new vaccines against brucellosis / B. S. 216. Oliveira // Expert review of vaccines, 2011. Vol. 10. – № 9. – Р. 1291–1305.

22. Olsen S. C. The important role of vaccines in programs to combat brucellosis and the eradication of livestock / S.C. Olsen, W. S. Stoffrege // Expert review of vaccines, 2005. – Vol. 4. – № 6. – Р. 915–928.

23. Recent Trends in Human Brucellansin / S. Marzetti, C. Carranza, M. Roncallo // Comparative Immunology, Microbiology and Infectious Disease 2013. vol. 36. – № 1. – Р. 55–61.

24. Schurig G. G. Brucellosis vaccines: past, present and future / G. G. Schurig, N. Sriranganathan, M. J. Corbel // Veterinary microbiology, 2002. vol. 90, vol. 1–4. – Р. 479–496.

25. Schurig G. G. et al. Biological properties of RB51; stable rough deformation of Brucella abortus. / G. G. Schurig, R. M. Roop, D. Buhrman // Vet Microbiol 1991. 28: 171-88.

26. Thomas E. L. Characterization of strains of 19 strains of Brucella abortus isolated from vaccinated cattle / E. L. Thomas, C. D. Bracewell, M. J. Corbel // Veterinary Record, 1981. vol. 108. – № 5. – Р. 90–93.

   
English version:

USING SPLIT-CONJUGATED ANTI-BRUCELLOSIS VACCINE AS A TRIGGER TO IDENTIFY ANIMALS SICK WITH BRUCELLOSIS

Veselovskiy Stepan Yuryevich, Cand. of Vet. Sci., Ass. Prof., Saratov State Vavilov Agrarian University, Saratov, Russia.

Agoltsov ValeriyAleksandrovich, Dr. of Vet. Sci., Prof., Saratov State Vavilov Agrarian University, Saratov, Russia.

ChastovAlekseyAleksandrovich, postgraduate student, Saratov State Vavilov Agrarian University, Saratov, Russia.

Popova Olga Mikhaylovna, Dr. of Biol. Sci., Ass. Prof., Head of Depart., Saratov State Vavilov Agrarian University, Saratov, Russia.

Devrishov Davud Abdulsemedovich, Dr. of Biol. Sci., Prof., Head of Depart., Moscow State Academy of Veterinary Medicine and Biotechnology, Moscow, Russia.

Keywords: animal brucellosis, splitconjugated vaccine against animal brucellosis, provocative action, animals with a hidden form of brucellosis, exacerbation of the infectious process.

Abstract. Split-conjugated vaccine against animal brucellosis as a provocateur was tested in order to identify (latent) sick animals in a brucellosis-insecure economy and a secure one. Antibodies are present in the blood of healthy animals for up to 2.5 months after test vaccination, then they disappear; in the blood of sick animals antibodies remain even after 3.5, 4.5, and 7.5 months and gradually disappear. Split-conjugated vaccine against animal brucellosis has a “provocative effect”; it aggravates the  slow infection, and thus makes it possible to identify sick animals. We recommend using a split-conjugated vaccine against brucellosis of animals in brucellosis-insecure farms in order to detect latently sick animals, and to create humoral immunity in animals while maintaining antibodies in the blood of animals for 2.5 months. In the case of smallscale (from 1 to 5) detection of sick animals in the cattle farm, we recommend using the vaccine twice with an interval of 3 months, both to identify animals with brucellosis and to create immunity in healthy animals. If a large number of animals (6 to 20 and more) with brucellosis is detected at the farm, we recommend using the vaccine once after eliminating the sick animals; then using the vaccine from the Brucella abortus 82 strain, which is to be applied to animals after calving (May – July). The splitconjugated vaccine against animal brucellosis can be used at any time of the year, since it does not cause abortions.

REFERENCES

1. Veselovsky S. Yu. Experimental application of a split-conjugated vaccine against animal brucellosis using a polyoxidonium immunomodulator // S. Yu. Veselovsky, V. A. Agoltsov, O. M. Popova, D. A. Devrishov, etc. // Scientific life. – Moscow. – 2018. – No. 2. – P. 89–100.

2. Ivanov N. P. Brucellosis of animals: methods and means of dealing with it. – Almaty, 2006. – 506 р.

3. Ivanov A. V. Immunological properties of vaccine strains Brucella abortus / IvanovA. V. // Veterinary science. – 2009. – No. 3. – P. 27–29.

4. Ivanov A. V. Finding the most effective live and gamma-inactivated anti-brutal vaccines for small cattle / A. V. Ivanov, R. Kh. Yusupov, K. M. Salmakov, etc. // Scientific and Production Journal “Veterinary doctor». – 2009. – No. 4. – P. 19–22.

5. The concept of controlling the risks of the occurrence and spread of epizootic centers of zooanthroponosis: Method provisions / SB Russian Agricultural Academy. – Novosibirsk, 2011. – 21 р.

6. Manual on the diagnosis of animal brucellosis of September 29, 2003 No. 13-5-02 / 0850.

7. Novitsky A. А. The use of provocative properties of a chemical vaccine for revealing latent forms of brucellosis / A. A. Novitsky // Modern problems and scientific support for the development of animal husbandry materials of the international scientific-practical conference. FSBEI of HE « P. A. Stolypin Omsk State Agrarian University. – 2016. – P. 153–159.

8. Ways of solving problems that cause the relevance of brucellosis / O. D. Sklyarov, A. I. Klimanov, K. V. Shumilov, etc. // Veterinary science. – 2011. – No. 1. – P. 34–38.

9. The reaction of indirect hemagglutination in cattle brucellosis / S. R. Khairov, O. Yu. Yusupov, K. V. Shumilov, A. I. Klimanov // Veterinary science. – 2005. – No. 5. – P. 25–26.

10. Sklyarov O. D. Ways of solving problems that make brucellosis topical / O. D. Sklyarov, A. I. Klimanov, K. V. Shumilov, A. A. Zinova, N. K. Bukova, I. A. Loginov // Veterinary medicine. – 2011. – No. 1. – P. 34–38.

11. Status and prospects of finding a new generation of vaccines for animal brucellosis / A. V. Ivanov, K. M. Salmakov, A. M. Fomin, A. N. Chernov // Scientific-Production Journal «Veterinary Doctor». – 2009. – No. 6. – P. 9–12. 123.

12. Adams L. G. Development of live vaccines against Brucella / L. G. Adams Ed., Pp. // in Studies of the study of brucellosis. – 1990. – Р. 250–256.

13. 128. Alton G. G. Rev 1 Brucella melitensis vaccine / G. G. Alton, S. S. Elberg // Veterinary Bulletin, 1967. – Vol. 37. – Р. 793–800.

14. Amano A. H. Takeuchi and N. Furuta: The outer mebrane vesicles function as an offensive weapon in host-parasite interactions / A. Amano, H. Takeuchi, N. Furuta // Microbes and Infection. – 2010. – Vol. 12. – No. 11. – Р. 791–798.

15. Ashford D. A. Adverse Events in Humans Associated with the Accidental Impact of the Brucellosis Cancer Vaccine in the Home RB51 / D. A. Ashford, J. Di Pietra, J. Lingappa // et al., Vaccine, vol. 22. – No. 25–26. – 2004. Р. 3435–3439.

16. Dzata G. K. Effect of adjuvants on immune responses in cattle injected with soluble antigen Brucella abortus / G. K. Dzata, A. W. Confer, J. H. Wyckoff // Veterinary microbiology, 1991. – Vol. 29. – No. 1. – Р. 27–48.

17. Evaluation of three competitive ELISAs and a fluorescence polarisation assay for the diagnosis of bovine brucellosis / Praud A., Durán-Ferrer M., Fretin D., Jaÿ M., O’Connor M., Stournara A., Tittarelli. Dias M., Garin-Bastuji B., The Veterinary Journal. – Volume 216, October 2016. – P. 38–44.

18. Jain-Gupta A. Vemulapalli et al. Pluronic P85 improves the effectiveness of external membrane vesicles as a subunit vaccine against Brucella melitensis in mice / A. Jain-Gupta, R. Contreras-Rodriguez // FEMS Immunology and Medical Microbiology. – 2012. Vol. 66. – No. 3. – Р. 436–444.

19. Marin C. M. The effect of antibiotics contained in two selective Brucella media on the growth of B. abortus, B. melitensis and B. ovis. / C. M. Marin, J. L. Alabart, J. M. Blasco // J Clin Microbiol, 1996. 34: 426-8.

20. Moriyon M. J. Coarse vaccines in animal brucellosis: structural and genetic basis and current status / M. J. Moriyón // Veterinary Research, 2004. – V. 35. – No. 1. – Р. 1–38.

21. Oliveira B. S. Barriers to the development of new vaccines against brucellosis / B. S. 216. Oliveira // Expert review of vaccines, 2011. Vol. 10. – No. 9. – Р. 1291–1305.

22. Olsen S. C. The important role of vaccines in programs to combat brucellosis and the eradication of livestock / S. C. Olsen, W. S. Stoffrege // Expert review of vaccines, 2005. – Vol. 4. – No. 6. – Р. 915–928.

23. Recent Trends in Human Brucellansin / S. Marzetti, C. Carranza, M. Roncallo // Comparative Immunology, Microbiology and Infectious Disease 2013. vol. 36. – No. 1. – Р. 55–61.

24. Schurig G. G. Brucellosis vaccines: past, present and future / G. G. Schurig, N. Sriranganathan, M. J. Corbel // Veterinary microbiology, 2002. vol. 90, vol. 1–4. – Р. 479–496.

25. Schurig G. G. et al. Biological properties of RB51; stable rough deformation of Brucella abortus. / G. G. Schurig, R. M. Roop, D. Buhrman // Vet Microbiol 1991. 28: 171-88.

26. Thomas E. L. Characterization of strains of 19 strains of Brucella abortus isolated from vaccinated cattle / E. L. Thomas, C. D. Bracewell, M. J. Corbel // Veterinary Record, 1981. Vol. 108. – No. 5. – Р. 90–93.

 

К содержанию»