Рогулева Н. О., Янков Н. В. Контроль жизнеспособности семян Rivina humilis L.  // Научная жизнь. 2021. Т. 16. Вып. 8. С. 1030–1038. DOI: 10.35679/1991-9476-2021-16-8-1030-1038

Рогулева Наталья Олеговна, канд. биол. наук, начальник отдела «Тропические и субтропические культуры», Ботанический сад Самарского университета, ФГАОУ ВО «Самарский национальный исследовательский университет им. акад. С. П. Королева»: Россия, 443086, г. Самара, ул. Московское шоссе, 34.
Янков Николай Викторович, агроном, Ботанический сад Самарского университета, ФГАОУ ВО «Самарский национальный исследовательский университет им. акад. С. П. Королева»: Россия, 443086, г. Самара, ул. Московское шоссе, 34.

Тел.: (919) 809-48-97
E-mail: yankov-n@mail.ru

В статье приводятся данные по всхожести, выполненности, влажности, морфологии и массе 1000 семян, собранных со взрослых растений Rivina humilis L., произрастающих в оранжерее Ботанического сада Самарского университета. Плоды этого декоративного комнатного растения были собраны в разные годы репродукции (с 2013 по 2021 год). Очищенные от околоплодника семена хранились в бумажных пакетах при комнатной температуре. Методом цифровой микрофокусной рентгенографии проведена экспресс–оценка качества семян. Выполненность семян составила от 97 до 100%. Признаков заселенности и поврежденности семян вредителями не обнаружено. Измерения размеров семян проводили в программе JMicroVision. Диаметр семян изменялся от 2.76 до 2.93 мм на протяжении 9 лет, что соотноситься с данными других исследователей. Для массы 1000 семян характерен следующий диапазон значений: от 3.71 до 4.26 г. Масса 1000 семян полученных в оранжерее Самарского ботанического сада сопоставима с массой 1000 семян полученных из природных мест обитания. Влажность семян составила 5.77–8.19%, для семян, хранившихся более года и 11.98% для свежесобранных. Семена сохраняли всхожесть после 9 лет хранения, лабораторная всхожесть была тем выше, чем свежее были семена. Первые проростки у семян Rivina humilis L. появились на 3-е сутки от начала постановки опыта. Самый высокий индекс скорости прорастания семян был у выборок 2020 и 2021 года. Семена, полученные в условиях оранжереи Ботанического сада Самарского университета, жизнеспособны и могут быть использованы для семенного обмена с другими ботаническими учреждениями.

Список литературы:

1. Атесленко Е. В., Кабушева И. Н. Влияние биологически активных веществ при генеративном размножении Rivina humilis L. и Psidium cattleianum Afzel. Ex Sabine. // Научные труды чебоксарского филиала Главного ботанического сада им. Н. В. Цицина РАН. – 2019. – № 13. – С. 18–23.

2. Безух Е. П., Потрахов Н. Н., Бессонов В. Б. Применение метода микрофокусной рентгенографии для контроля качества семян плодовых культур // Технологии и технические средства механизированного производства продукции растениеводства и животноводства: теор. и науч-практ. журн. – ИАЭП. СПб., 2016. – Вып. 89. – С. 106–112.
3. ГОСТ 12038–84. Межгосударственный стандарт. Семена сельскохозяйственных культур. Методы определения всхожести. – М.: Стандартинформ, 2011. – 30 с.
4. ГОСТ 12041–82 Семена сельскохозяйственных культур. Метод определения влажности. – М.: Стандартинформ, 2011. – 6 с.
5. Зайцев Г. Н. Методика биометрических расчетов. Математическая статистика в экспериментальной ботанике. – М.: «Наука», 1973. – 256 с.
6. Мусаев Ф. Б., Потрахов Н. Н., Белецкий С. Л. Краткий атлас рентгенографических признаков семян овощных культур. – М.: Изд-во ФГБНУ ФНЦО, 2018. – 40 с.
7. Рентгенографический анализ качества семян овощных культур: методические указания / отв. сост. канд. с.-х. наук Ф. Б. Мусаев. – СПб.: СПбГЭТУ «ЛЭТИ», 2015. – 42 с.
8. Ткаченко К. Г. Рентгенографический метод определения качества репродуктивных диаспор и выявления в них вредителей / Мониторинг и биологические методы контроля вредителей и патогенов древесных растений: от теории к практике: материалы Всерос. конф. с междунар. участием. – Красноярск, 2016. – С. 226–227.
9. Трубников А. М., Янков Н. В. Регистрация эпидермальных структур листьев древесных растений методом планшетного сканирования // Научная жизнь. – М., 2018. – № 8. – С. 84–91.
10. Ajaib M., Zikrea A., Khan K. M., Perveen S., Shah S., Karim A. Rivina humilis L.: A Potential Antimicrobial and Antioxidant Source. // Chemical Society of Pakistan, 2013. – Vol. 35(5). – Pp.1384–1398.
11. Binning L. K., Wiese A. N. Calculating the threshold temperature of development for weeds // Weed Sci. – 1987. – Vol. 35. – Pp. 177–179.
12. Environment Weeds of Australia. Rivina humilis L. 2016. – URL: https://keyserver.lucidcentral.org/weeds/data/media/Html/rivina_humilis.htm
13. FAO. Genebank Standards for Plant Genetic Resources for Food and Agriculture. // Rome. 2013. – URL: http://www.fao.org/docrep/019/i3704e/i3704e.pdf
14. Khan M. I., Joseph K. M. D., Muralidhara, Ramesh HP, Giridhar P, Ravishankar GA Acute, subacute and subchronic safety assessment of betalains rich Rivina humilis L. berry juice in rats // Food Chem Toxicol. – 2011. – №49. – Pp. 3154–3157.
15. Rao N. K., Hanson J., Dulloo M. E., Ghosh K., Nowell D. and Larinde M. Manual of seed handling in genebanks // Handbooks for Genebanks No. 8. Bioversity International, Rome, Italy, 2006. – URL: https://www.bioversityinternational.org/fileadmin/user_upload/online_library/publications/pdfs/1167.pdf
16. Rivina humilis L. in GBIF Secretariat. GBIF Backbone Taxonomy. Checklist dataset, 2021. – URL: https:// gbif.org.
17. Seed Information Database – SID, Royal Botanical Gardens, Kew, UK. 2021. – URL: https://data.kew.org/sid/
18. Thieret, J. W. Seeds of some United States Phytolaccaceae and Aizoaceae. // Sida, Contribution to Botany. – 1966. №2. – Pp. 352–360.
19. Tseng, Yen–Hsueh & Wang, Chih–Chiang & Chen, Yun–Tsao. Rivina humilis L. (Phytolaccaceae), a Newly Naturalized Plant in Taiwan. // Taiwania. – 2008. – 53 (4). – Pp. 417–419.

CONTROL OF SEED VIABILITY OF RIVINA HUMILIS L.

Roguleva Natalya Olegovna, Cand. of Biol. Sci., Prof., Head of the Tropical and Subtropical Cultures Department, Botanical Garden of the Samara University, Samara National Research University named after acad. S. P. Korolev, Samara, Russia.
Yankov Nikolai Viktorovich, agronomist, Botanical Garden of Samara University, Samara National Research University named after acad. S. P. Korolev, Samara, Russia.

Keywords: weight of 1000 seeds; microfocus radiography; seed quality; seed viability; seed moisture; fulfillment of seeds; seed size.

Abstract. The article presents data on germination, completion, moisture content, morphology and weight of 1000 seeds collected from adult plants of Rivina humilis L. growing in the greenhouse of the Botanical Garden of Samara University. The fruits of this ornamental houseplant were collected in different years of reproduction (from 2013 to 2021). The seeds cleaned from the pericarp were stored in paper bags at room temperature. Express-assessment of seed quality was carried out using the method of digital microfocus radiography. Seed fulfillment ranged from 97 to 100%. No signs of pest infestation or seed damage were found. Seed sizes were measured using the JMicroVision program. The seed diameter changed from 2.76 to 2.93 mm over 9 years, which is consistent with the data of other researchers. The weight of 1000 seeds is characterized by the following range of values: from 3.71 to 4.26 g. The weight of 1000 seeds obtained in the greenhouse of the Samara Botanical Garden is comparable to the weight of 1000 seeds obtained from natural habitats. The seed moisture content was 5.77–8.19% for seeds stored for more than a year and 11.98% for freshly harvested seeds. Seeds remained viable after 9 years of storage, laboratory germination was the higher, the fresher the seeds were. The first seedlings in the seeds of Rivina humilis L. appeared on the 3rd day from the start of the experiment. The highest seed germination rate index was in the 2020 and 2021 samples. Seeds obtained in the greenhouse conditions of the Botanical Garden of Samara University are viable and can be used for seed exchange with other botanical institutions.