Авторы: |
Пчельников Александр Владимирович, канд. ветеринар. наук, доцент, ФГБОУ ВО «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии – МВА им. К. И. Скрябина»: Россия, 109472, г. Москва, ул. Академика Скрябина, 23. Яцентюк Светлана Петровна, канд. биол. наук, зав. отделом, ФГБУ «Всероссийский государственный Центр качества и стандартизации лекарственных средств для животных и кормов»: Россия, 123022, г. Москва, Звенигородское ш., 5. Красникова Мария Сергеевна, канд. биол. наук, вед. науч. сотр., ФГБУ «Всероссийский государственный Центр качества и стандартизации лекарственных средств для животных и кормов»: Россия, 123022, г. Москва, Звенигородское ш., 5. Долинская Ксения Георгиевна, специалист 1 категории, ФГБУ «Всероссийский государственный Центр качества и стандартизации лекарственных средств для животных и кормов»: Россия, 123022, г. Москва, Звенигородское ш., 5. Падило Лариса Павловна, канд. биол. наук, доцент кафедры «Болезни животных и ветеринарно-санитарная экспертиза», ФГБОУ ВО «Саратовский государственный университет генетики, биотехнологии и инженерии им. Н. И. Вавилова»: Россия, 410012, Саратовская обл., г. Саратов, пр-кт им. Петра Столыпина зд. 4, стр. 3. Агольцов Валерий Александрович, д-р ветеринар. наук, профессор кафедры «Болезни животных и ветеринарно-санитарная экспертиза», ФГБОУ ВО «Саратовский государственный университет генетики, биотехнологии и инженерии им. Н. И. Вавилова»: Россия, 410012, Саратовская обл., г. Саратов, пр-кт им. Петра Столыпина, зд. 4, стр. 3.
Тел.: (917) 207-40-45 E-mail: agoltsov-saratov@yandex.ru
|
Список литературы:
|
1. Анализ и оценка риска заноса возбудителей чумы мелких жвачных животных, оспы овец и оспы коз через территорию Западно-Казахстанской области в Российскую Федерацию / Л. П. Падило, В. А. Агольцов, А. М. Семиволос, С. А. Семиволос // Международный вестник ветеринарии. – 2023. – № 3. – С. 58-65. – DOI 10.52419/issn2072-2419.2023.3.58.
2. Анализ распространения лейкоза крупного рогатого скота в Саратовской области / О. П. Бирюкова, В. А. Агольцов, Л. П. Падило [и др.] // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н. Э. Баумана. – 2024. – Т. 258, № 2. – С. 20-25. – DOI 10.31588/2413_4201_1883_2_258_20. 3. Изучение циркуляции вирусных патогенов среди оленей Московской области / С. П. Яцентюк, М. С. Красникова, К. Г. Долинская, А. В. Пчельников // Труды Всероссийского НИИ экспериментальной ветеринарии имени Я. Р. Коваленко. – 2023. – № 83. – С. 299-304. – DOI 10.31016/viev-2023-83-4-8. 4. Моделирование риска распространения заразного узелкового дерматита крупного рогатого скота на территории юго-Востока Европейской части РФ / Д. В. Подшибякин, Л. П. Падило, В. А. Агольцов [и др.] // Ученые записки учреждения образования Витебская ордена Знак почета государственная академия ветеринарной медицины. – 2024. – Т. 60, № 1. – С. 37-42. – DOI 10.52368/2078-0109-2024-60-1-37-42. 5. Обзор эпизоотической ситуации по чуме мелких жвачных животных в мире с применением картографических инструментов / Л. П. Падило, С. В. Ларионов, В. А. Агольцов, Д. В. Подшибякин // Научная жизнь. – 2023. – Т. 18, № 3 (129). – С. 461-469. – DOI 10.35679/1991-9476-2023-18-3-461-469. 6. Оценка эпизоотической ситуации бруцеллеза крупного рогатого скота в Саратовской области / В. А. Агольцов, Л. П. Падило, О. П. Бирюкова [и др.] // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н. Э. Баумана. – 2024. – Т. 258, № 2. – С. 4-8. – DOI 10.31588/2413_4201_1883_2_258_4. 7. Природная очаговость инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота в Московской области / А. В. Пчельников, С. П. Яцентюк, М. С. Красникова, К. Г. Долинская // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. – 2023. – Т. 256, № 4. – С. 206-212. – DOI 10.31588/2413_4201_1883_4_256_206. 8. Пчельников, А. В. Циркуляция вирусов герпеса крупного рогатого скота (Herpesviridae: Varicellovirus) и диареи крупного рогатого скота (Flaviviridae: Pestivirus среди диких парнокопытных животных Московской области / А. В. Пчельников, С. П. Яцентюк, М. С. Красникова // Вопросы вирусологии. – 2023. – Т. 68, № 2. – С. 142-151. – DOI 10.36233/0507-4088-167. 9. Сюрин В. Н. Вирусные болезни животных / В. Н. Сюрин, А. Я. Самуйленко, Б. В. Соловьев и др. // М.: ВНИТИБП, 1998. – 928 с., ил. 10. Шуляк А. Ф., Горбатов А. В., Стаффорд В. В., Лощинин М. Н., Величко Г. Н., Соколова Н. А., Журавлева Е. А., Ишкова Т. А., Носова М. В. Смешанная инфекция у диких парнокопытных в охотхозяйстве // Ветеринария: научно-производственный журнал. – 2020. – № 10. – С. 20-25 11. Яцентюк, С. П. Изучение распространенности аденовирусов в популяциях диких парнокопытных Московской области / С. П. Яцентюк, М. С. Красникова, А. В. Пчельников // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. – 2022. – № 10. – С. 68-75. – DOI 10.36871/vet.zoo.bio.202210008. 12. Analysis of environmental factors influencing lumpy skin disease outbreak seasonality and assessment of its spread risk in the Saratovskaya oblast of Russia / D. Podshibyakin, L. Padilo, V. Agoltsov [et al.] // Veterinary World. – 2024. – P. 630-644. – DOI 10.14202/vetworld.2024.630-644. 13. Analysis of peste des petits ruminant’s virus spread and the risk of its introduction into the territory of the Russian Federation / V. A. Agoltsov, D. V. Podshibyakin, L. P. Padilo [et al.] // Veterinary World. – 2022. – Vol. 15, No. 7. – P. 1610-1616. 14. Assessment of the peste des petits ruminant’s world epizootic situation and estimate its spreading to Russia / F. Bouchemla, V. A. Agoltsov, L. P. Padilo, O. M. Popova // Veterinary World. – 2018. – Vol. 11, No. 5. – P. 612-619. – DOI 10.14202/vetworld.2018.612-619. 15. Bartha A., Hajdu G., Aldásy P., Paczolay G. Occurrence of encephalitis caused by infectious bovine rhinotracheitis virus in calves in hungary. Acta Vet Acad Sci Hung. 1969;19(2):145-151. 16. Casaubon, J., Vogt, H. R., Stalder, H., Hug, C. Ryser-Degiorgis, M. P., 2012. Bovine viral diarrhea virus in free-ranging wild ruminants in Switzerland: low prevalence of infection despite regular interactions with domestic livestock. BMC Vet. Res. 8, 204. 17. Cripps J. K., Pacioni C., Scroggie M. P., Woolnough A. P., Ramsey D. S. L. Introduced deer and their potential role in disease transmission to livestock in Australia. Mammal. Rev. 2019; 49: 60–77. doi:10.1111/mam.12142. 18. Dastjerdi, A., Jeckel, S., Davies, H., Irving, J., Longue, C., Plummer, C., Vidovszky, M.Z., Harrach, B., Chantrey, J., Martineau, H., & Williams, J. (2022). Novel adenovirus associated with necrotizing bronchiolitis in a captive reindeer (Rangifer tarandus). Transboundary and Emerging Diseases, 69, 3097–3102. https://doi.org/10.1111/tbed.14374 19. Fernández-Aguilar X., López-Olvera J.R., Marco I., et al. Pestivirus in alpine wild ruminants and sympatric livestock from the Cantabrian Mountains, Spain. Vet Rec. 2016;178(23):586. doi:10.1136/vr.103577 20. Hajnická V., Kúdelová M., Štibrániová I., et al. Tick-Borne Transmission of Murine Gammaherpesvirus 68. Front Cell Infect Microbiol. 2017; 7:458. Published 2017 Oct 31. doi:10.3389/fcimb.2017.00458 21. Kálmán D., Egyed L. PCR detection of bovine herpesviruses from nonbovine ruminants in Hungary. J Wildl Dis. 2005;41(3):482-488. doi:10.7589/0090-3558-41.3.482. 22. Kim J. H., Jang J. H., Yoon S. W., Noh J. Y., Ahn M. J., Kim Y., Jeong D. G. and Kim H. K. Detection of bovine coronavirus in nasal swab of noncaptive wild water deer, Korea. Transboundary and Emerging Diseases, 2018, 65, 627–631. 23. Krasnikova M. S., Lazareva E. A. and Yatsentyuk S. P. The Effect of Disinfectants on the SARS-CoV-2 RNA Detection in Swabs from Various Surfaces. Applied biochemistry and microbiology, 2022, 58 (8): 932–937. https://doi.org/10.1134/S000368382208004X. 24. Larska, M., Krzysiak M., Kęsik-Maliszewska J., Rola J. Cross-sectional study of Schmallenberg virus seroprevalence in wild ruminants in Poland at the end of the vector season of 2013. BMC Veterinary Research (2014) 10:967 25. Lillehaug A., Vikøren T., Larsen I. L., Akerstedt J., Tharaldsen J., Handeland K. Antibodies to ruminant alpha-herpesviruses and pestiviruses in Norwegian cervids. J. Wildl. Dis. 2003; 39(4): 779–86. doi:10.7589/0090-3558-39.4.779. 26. M. Fabisiak, A. Sałamaszyńska, T. Stadejek. Detection of seroconversion to bovine herpesvirus 1 related alphaherpesvirus and bovine viral diarrhea virus in Polish free-living deer. Polish Journal of Veterinary Sciences Vol. 21, No. 3 (2018), 437–440 27. Meyer G., d’Offay J., Thiry E., Les encephalitis à herpèsvirus bovins, Point Vét. 31 (2000) 417–424. 28. Rodríguez-Prieto V, Kukielka D, Rivera-Arroyo B, et al. Evidence of shared bovine viral diarrhea infections between red deer and extensively raised cattle in south-central Spain. BMC Vet Res. 2016; 12:11. Published 2016 Jan 14. doi:10.1186/s12917-015-0630-3 29. Rola J., Larska M., Socha W., Rola J. G., Materniak M., Urban-Chmiel R., et al. Seroprevalence of bovine herpesvirus 1 related alphaherpesvirus infections in free-living and captive cervids in Poland. Vet. Microbiol. 2017; 204: 77–83. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2017.04.006. 30. Taylor R. E., Seal B. S., St Jeor S. Isolation of infectious bovine rhinotracheitis virus from the soft-shelled tick, Ornithodoros coriaceus. Science. 1982 Apr 16;216(4543):300-1. doi: 10.1126/science.6278596. PMID: 6278596. 31. The first study on the occurrence of bovine herpesviruses in the wild fauna of the Moscow region, Russia / S. Yatsentyuk, A. V. Pchelnikov, E. R. Safina, M. S. Krasnikova // Veterinary World. – 2022. – Vol. 15, No. 8. – P. 2052-2058. 32. Tzipori, S., Caple, I. W., Butler, R., 1976. Isolation of a rotavirus from deer. Vet. Rec. 99, 398. 33. Yatsentyuk S., Krasnikova M., Dolinskaya K. and Pchelnikov A. (2024). PCR-based study on viral pathogens circulation among cervids in the Moscow region. Online J. Anim. Feed Res., 14(2): 157-164. DOI: https://dx.doi.org/10.51227/ojafr.2024.19
|
English version: |
PREVALENCE OF VIRAL PATHOGENS IN WILD ARTIODACTYL RUMINANTS OF THE MOSCOW AND TVER REGIONS
Pchelnikov Alexander Vladimirovich, Cand. of Vet. Sci., Ass. Prof., Moscow state academy of veterinary medicine and biotechnology – MBA named after K.I. Skryabin, Moscow, Russia. Yatsenyuk Svetlana Petrovna, Cand. of Biol. Sci., Head of Depart., All-Russian state center for quality and standardization of medicines for animals and feed, Moscow, Russia. Krasnikova Maria Sergeevna, Cand. of Biol. Sci., Leading Researcher, Ass. Prof., All-Russian state center for quality and standardization of medicines for animals and feed, Moscow, Russia. Dolinskaya Kseniya Georgievna, specialist of the 1st category, Ass. Prof., All-Russian state center for quality and standardization of medicines for animals and feed, Moscow, Russia. Padilo Larisa Pavlovna, Cand. of Biol. Sci., Ass. Prof. of the Depart. of Animal diseases and veterinary and sanitary expertise, Saratov state university of genetics, biotechnology and engineering named after N.I. Vavilov, Saratov, Russia. Agoltsov Valery Alexandrovich, Dr. of Vet. Sci., Prof. of the Depart. of Animal diseases and veterinary and sanitary expertise, Saratov state university of genetics, biotechnology and engineering named after N.I. Vavilov, Saratov, Russia.
Keywords: deer, cattle, PCR, viruses, BoHV-1, BVD, adenoviruses.
Abstract. The article presents the final stage of monitoring the circulation of viruses pathogenic to cattle in the population of wild artiodactyl ruminants in the Moscow and Tver regions. Samples of pathological material from wild artiodactyls (pieces of parenchymal organs, nasal mucosa flushes, blood from the heart) were taken from wild animals shot during the winter hunting season of 2023 in the Moscow and Tver regions. The sampling was carried out posthumously by veterinarians of the State Veterinary Service of the specified subjects of the Russian Federation. A total of 113 samples were taken from 49 animals. Based on the results of a 5-year study, the authors conclude that the prevalence of bovine type 1 herpesvirus among deer living on the territory of the surveyed subjects. Data on isolated cases of detection of genetic material of bovine herpesvirus type 5 and bovine diarrhea virus in wild ungulates in the Moscow region are presented. In addition, the genetic material of ruminant mastadenovirus, which had not previously been described in the scientific literature, was detected in 6 animals living both in the Moscow Region and in the Tver region. According to the authors, the results of this work can become a key link in understanding the role of wild artiodactyls in the spread of viral pathogens and become the basis for developing measures aimed at improving the level of biological protection of livestock farms. Thus, the results of our active monitoring of the circulation of viral pathogens in the wild fauna of the Moscow and Tver regions allow us to confirm the prevalence of BoHV-1 among representatives of deer in the territory of these subjects of the Russian Federation, as well as to conclude about the possible role of wild ruminant artiodactyls as a natural reservoir of this herpesvirus.
|