Черкашина М. И., Алимгафаров Р. Р., Черкашина А. Г. Особенности клонального микроразмножения растений яблони сибирской в условиях in vitro // Научная жизнь. 2025. Т. 20. Вып. 6 (144). С. 1575-1581. DOI: 10.35679/1991-9476-2025-20-6-1575-1581

Черкашина Мария Ильинична, зав. отдела биоклональной и молекулярно-генетической лаборатории, ФГБОУ ВО «Арктический государственный агротехнологический университет»: Россия, 677008, Республика Саха (Якутия), г. Якутск, ш. Сергеляхское 3 км, 3.
Алимгафаров Раиль Рафикович, канд. с.-х. наук, доцент, декан факультета агротехнологии и лесного хозяйства, ФГБОУ ВО «Башкирский государственный аграрный университет»: Россия, 450001, Республика Башкортостан, г. Уфа, ул. 50-летия Октября, 34.
Черкашина Анна Георгиевна, д-р с.-х. наук, профессор, Почетный работник высшего образования РФ, профессор кафедры «Общая зоотехния», ФГБОУ ВО «Арктический государственный агротехнологический университет»: Россия, 677008, Республика Саха (Якутия), г. Якутск, ш. Сергеляхское 3 км, 3.

Тел.: (995) 944-72-15
E-mail: 703210@internet.ru

Род яблоня (Malus Mill.) насчитывает около 50 видов, произрастающих в различных районах с умеренным и субтропическим климатом в Европе, Азии и Америке. Прародиной яблони была Восточная Азия – там встречается самое большое число видов дикорастущих яблонь. Через Центральную Азию, территорию современного Ирана и Закавказья еще в доисторическое время яблоня попала в Малую Азию, а затем через Древнюю Грецию и Древний Рим распространилась по всей Европе. Во времена, когда Северная Америка еще была соединена с Азией, яблоня успела попасть и в Америку – там есть свои собственные виды диких яблонь. Родиной одомашненной яблони считают предгорья Алатая, территорию современных Казахстана и Киргизии. Именно там до сих пор произрастает дикая яблоня Сиверса, давшая начало домашней яблоне. Дикорастущие яблони сохраняют привлекательность в течение всего вегетационного периода. Окраска цветков с приятным ароматом охватывает практически все оттенки от белого до интенсивно-розового и карминового, а осенняя окраска листвы варьирует от светло-зеленой до буро-антоциановой. Сохраняющиеся на ветвях плоть до середины зимы плоды также отличаются разнообразием формы и окраски и представляют отличный материал для составления флористических композиций. Оптимизированная технология микроклонального размножения дикорастущих яблонь является основой для получения посадочного материала для применения в озеленении, а также проведения работ по созданию генетических банков in vitro с целью сохранения генофонда яблони и последующего использования различных ее видов в селекционном процессе. Результаты эксперимента по оптимизации технологии размножения яблони in vitro показали целесообразность проведения последнего перед укоренением субкультивирования микропобегов на среде с пониженным содержанием BAP (0,5 мг/л), что согласуется с данными других авторов, предлагающих снижать содержание гормона до 0,7–1,0 мг/л. При этом формируются хорошо олиственные микропобеги большего размера (1,5–2,3 см в нашем эксперименте).

Список литературы:

1. Егоров Р. В., Антуфьева В. Ф. Систематические и биологические особенности яблони // Актуальные научные исследования в современном мире. – 2021. – № 6-2. – С. 30-34
2. Чурикова Н. Л. Агробиологическая оценка новых клоновых подвоев яблони селекции Мичуринского ГАУ в условиях ЦЧР : дис. … канд. с.-х. наук : 06.01.08 / Чурикова Наталия Леонидовна. – Мичуринск, 2019. – 194 с.
3. Атажанова Е. В., Лукичева Л. А. Анализ состояния и мировые тенденции выращивания и селекции яблони // Биология растений и садоводство: теория, инновации. – 2021. – № 3 (160). – С. 76-85
4. Упадышев М. Т., Макаров С. С., Упадышева Г. Ю. Устойчивость яблони к высокотемпературному стрессу // Известия Тимирязевской сельскохозяйственной академии. – 2024. – № 1. – С. 89-99
5. Седов Е. Селекция и новые сорта яблони. – Litres, 2023
6. Чурикова О. А. Роль биотехнологических методов в сохранении биоразнообразия антропогенных экосистем и формировании их флористического состава // Селекция и сорторазведение садовых культур. – 2017. – Т. 4, № 1-2. – С. 151-153
7. Якимова О. В. Морфогенез in vitro и клональное микроразмножение перспективных эфиромасличных растений семейства Lamiaceae–Melissa officinalis L. и Origanum vulgare L / Дис.… канд. биол. наук. – Симферополь: ФГБУН НИИСХ Крыма, 2019. – Т. 192
8. Получение меристемных растений в селекции рододендрона даурского на безвирусной основе / М. И. Черкашина, Р. Р. Алимгафаров, И. Г. Асылбаев, А. Г. Черкашина // Научная жизнь. – 2025. – Т. 20, № 3 (141). – С. 690-695. – DOI: 10.35679/1991-9476-2025-20-3-690-695
9. Оzherelieva Z. Е. et al. Study of the Influence of Organomineral Fertilizers on the Resistance to Spring Frost of Apple Trees // Vestnik Rossijskoj selʹskohozyajstvennoj nauki. – 2025. – № 1. – С. 19-24.
10. Абдурасулов А. Размножение древесных лесных растений в условиях in vitro // Ceteris paribus. – 2023. – № 1. – С. 37-40.
11. Абдурасулов А. Размножение древесных лесных растений в условиях in vitro // Ceteris paribus. – 2023. – № 1. – С. 37-40.
12. Yerbolova L. S. et al. Enhancing Clonal Micropropagation of Zarya Alatau Apple // HortTechnology. – 2024. – Т. 34, № 5. – С. 613-617
13. Duta-Cornescu G. et al. Somaclonal variation—Advantage or disadvantage in micropropagation of the medicinal plants // International journal of molecular sciences. – 2023. – Т. 24, № 1. – С. 838
14. Tashmatova L. V., Matsneva O. V., Khromova T. M. Clonal micropropagation of apple trees // Vestnik Rossijskoj selʹskohozyajstvennoj nauki. – 2023. – № 6. – С. 71-76
15. Tatsiana K. In vitro culture establishment and proliferation of belarussian apple cultivars //Science and innovation. – 2024. – Т. 3. – № Special Issue 49. – С. 296-302.

FEATURES OF CLONAL MICROPROPAGATION OF SIBERIAN APPLE PLANTS IN VITRO

Cherkashina Maria Ilyinichna, Head of the Depart. of the Bioclonal and molecular genetic laboratory, Arctic state agrotechnological university, Yakutsk, Russia.
Alimgafarov Rail Rafikovich, Cand. of Agr. Sci., Ass. Prof., Dean of the Faculty of Agrotechnology and forestry, Bashkir state agrarian university, Ufa, Russia.
Cherkashina Anna Georgievna, Dr. of Agr. Sci., Prof., Honorary worker of higher education of the Russian Federation, Prof. of the Depart. of Traditional industries of the North, Arctic state agrotechnological university, Yakutsk, Russia.

Keywords: apple tree, variety, Siberian, micropropagation, in vitro.

Abstract. The apple genus (Malus Mill.) comprises approximately 50 species, native to various temperate and subtropical climates in Europe, Asia, and the Americas. East Asia was the apple's original homeland, where the largest number of wild apple species are found. Through Central Asia, modern-day Iran, and the Transcaucasus, the apple tree reached Asia Minor in prehistoric times, and then spread throughout Europe via Ancient Greece and Rome. When North America was still connected to Asia, the apple tree also reached the Americas, where it has its own wild apple species. The foothills of the Altai Mountains, in what is now Kazakhstan and Kyrgyzstan, are considered the birthplace of the domesticated apple tree. It is there that the wild apple tree, Malus sieversii, which gave rise to the domesticated apple, still grows. Wild apple trees retain their attractiveness throughout the growing season. The pleasantly fragrant flowers range in color from white to deep pink and carmine, while autumn foliage varies from light green to anthocyanin-brown. The fruits, which remain fleshy on the branches until mid-winter, also exhibit a variety of shapes and colors and provide excellent material for floral arrangements. Optimized micropropagation technology for wild apple trees provides the basis for obtaining planting material for landscaping, as well as for creating in vitro gene banks to preserve the apple gene pool and subsequently use various varieties in breeding. The results of an experiment to optimize in vitro apple propagation technology demonstrated the feasibility of subculturing microshoots on a medium with a reduced BAP content (0.5 mg/L) before rooting. This is consistent with data from other authors who suggest reducing the hormone content to 0.7-1.0 mg/L. At the same time, well-leafed micro-shoots of a larger size are formed (1.5 - 2.3 cm in our experiment).